Третья международная ирано-российская конференция
«Сельское хозяйство
и природные ресурсы». М., 2002
У СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ПТИЦ
Ю.И. Забудский*
Российский государственный аграрный заочный
университет, ул.Фучика, 1,
143900 Балашиха, Россия
Резюме: Сделан критический анализ методов диагностики стресса у птиц, обсуждаются
достоинства метода, предложенного автором.
Использование
промышленных технологий в птицеводстве существенно интенсифицировало
производство диетической пищевой продукции. Однако,
при интенсивных технологиях имеют место ситуации, вызывающие развитие состояния
стресса у поголовья и появления характерных нозологических единиц, в т.ч.
гипокинезии, истерии, синдрома жирной печени, иммунодефицитов и др.( Бессарабов, 1983; Киселев, 1983; Болотников И.А.,
Конопатов Ю.В, 1987; Данилова, Найденский, 1989; Фисинин,Столляр,1989; Gross, Siegel, 1983; Freeman, 1987). Для рационального
планирования и проведения ветеринарных и технологических мероприятий,
адекватного применения средств профилактики стресса
необходим постоянный мониторинг за состоянием организма птиц. Для этого нужны
маркеры, т.е. показатели функционального состояния клеток и органов или их
систем, характеристики которых закономерно изменяются при развитии
постстрессорной реакции и могут быть использованы в качестве индикаторов. Существующие методы, применяемые с этой
целью, принято классифицировать на три группы: физиологические, этологические и
показатели продуктивности (Hill, 1983). Однако, большинство из них имеют свои
недостатки, что требует от исследователя очень осторожного выбора маркеров.Физиологические тесты принято делить на прямые и косвенные.
Первые включают определение медиаторов и гормонов, выделяемых в кровь вследствие
возбуждения нейро-эндокринной системы. Однако,
концентрация этих биологических активных веществ настолько лабильна, что собственно процесс
отбора проб крови уже приводит к ее значительному увеличению (Freeman, 1977).
Исследователи часто используют в
своих наблюдениях один из косвенных физиологических тестов – соотношение
гетерофилов и лимфоцитов, циркулирующих в крови птиц (Семен, Демчук, 1985;
Забудский, Скутарь, 1993; Gross, 1984; Gross, Siegel, 1983; Beuving G., Jones R., Blockhius H., 1989. Утановлено, что соотношение Г/Л в
периферической крови увеличивается за
счет числа гетерофилов и уменьшения числа лимфоцитов пропорционально степени
действия различных стресс-факторов (вакцинация, социальный стресс) и коррелирует
с изменением уровня кортикостерона в плазме крови.
Доказано, что соотношение Г/Л более
объективный тест, чем концентрация этого гормона, т.к. величина искомого
соотношения менее лабильна, а процедура отбора проб крови не вызывает изменения
соотношения этих клеток, как это происходит с концентрацией кортикостерона.
Кроме того, многочисленными исследованиями показано, что гормональный статус
имеет циркадный ритм, а у несушек определяется еще и фазой формирования яйца
(Известно, что иммунная система животных, в частности, птиц опосредованно
участвует в развитии стресс-реакции, а показатели ее функционального состояния
считаются перспективными в качестве
маркеров состояния напряжения организма (Siegel, 1985). Установлено, что вследствие
развития стресс-реакции нарушается синтез интерлейкинов и изменяется кооперация
отдельных популяций лимфоцитов.
В связи с изложенным можно
предположить, что действие стресс-факторов вызывает не только изменение
величины соотношения Г/Л, но и их функционального состояния, возможно,
миграционной активности лейкоцитов. Поэтому нами проведены наблюдения за
изменением кинетики данного показателя у цыплят в состоянии покоя и стресса.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Исследования проведены на
цыплятах в условиях промышленных
птицефабрик.
Пробы крови отбирали из крыловой вены
в сухие обезжиренные пробирки, орошенные раствором лимоннокислого натрия.
Соотношение гетерофилов и лимфоцитов Г/Л
исследовали на мазках периферической крови, окрашенных по прописи Паппенгейма, с использованием красителей Май-Грюнвальда и Романовского-Гимза
(Ромейс, 1953).
Миграционную активность лейкоцитов (МАЛ) периферической крови определяли капиллярным способом ( Баева, Бешлей, 1982, Болотников, Конопатов, 1987) в нашей модификации.
Определенный объем крови, например,
0,3 мл смешивали в пробирке с равным объемом раствора Хенкса. Осторожно
пипетировали полученную смесь и инкубировали в термостате при 37° С в течение 30 мин.
Извлекали из термостата, еще раз пипетировали в стеклянные капилляры с
внутренним диаметром 1,0-
По окончании центрифугирования
капилляры с содержимым расслоившимся на форменные
элементы и жидкую часть, состоящую из плазмы и раствора Хенкса, с помощью
пластилина укрепляли на предметном стекле. На микроскопе МБС-9, оснащенном
микрометром, производили измерения длины столба форменных элементов. Предметные
стекла с капиллярами в горизонтальном положении помещали в термостат при 37° С на инкубацию в течение 16-18 ч. Следует иметь в виду,
что при увеличении продолжительности инкубации в капилляре образуются пузырьки
воздуха, что затрудняет дальнейшие измерения и уменьшает точность определения
МАЛ.
По завершении инкубации предметные
стекла с капиллярами извлекали из
инкубатора и проводили повторное измерение длины столба форменных элементов.
Вследствие миграции лейкоцитов длина последнего увеличивается за счет
образовавшегося конуса, состоящего из лейкоцитов, мигрировавших в сторону смеси
плазмы и раствора Хенкса. Определив разницу между данными второго и первого
измерения, и, выразив ее в миллиметрах, получили данные о величине МАЛ у
соответствующей особи.
Для того,
чтобы оценить возможное закономерное изменение величины МАЛ при стрессе, а также
определить информативность этого показателя, мы провели сравнительное
исследование кинетики соотношения Г/Л и МАЛ у цыплят, находящихся в состоянии
покоя и стресса.
В двух сериях опытов использовали два
различных по природе стресс-фактора: действие пониженной температуры или
голодание и жажду.
Опыт проводили на 20-дневных
цыплятах, отобранных по методу аналогов, содержащихся в птичнике при температуре 28-29° С.
После пятидневного подготовительного
периода у всех особей отбирали пробы
крови из крыловой вены. Затем 15 голов опытной группы поместили в картонные коробки перенесли в помещение с
температурой 10° С, где выдерживали в течение 2 ч.
Другие 15 голов, составляющих контрольную группу, переместили в другое
помещение, где температура была такой же, как и в птичнике, и также
выдержали 2 ч. По истечении этого срока
цыплята обоих групп были возвращены в
клетки. У них отбирали пробы крови через 3, 4 и 96 ч от начала опыта.
Другой опыт осуществили на 18-дневных
цыплят, отобранных по методу аналогов. Особи опытной группы в течение 24 часов
не получали корм и воду. В остальном режим содержания,
микроклимат, рацион кормления и поения, методика определения искомых
показателей были идентичны условиям предыдущего опыта. До голодания и жажды, а
также через 24, 32 и 110 ч от начала опыта отбирали пробы крови.
Полученные данные обработаны методами
вариационной статистики с использованием критерия Стьюдента.
В покое у 20-дневных цыплят величина МАЛ составила в среднем 6,0±
Величина соотношения Г/Л также изменилась
в результате действия стресс-фактора. Так, через один час после
прекращения действия холода величина Г/Л
у контрольных равнялась 0,40± 0,11, а у опытных увеличивалась до 0,65± 0,10 (Р<0,05).
Достоверность различий величины МАЛ и Г/Л в контрольной и опытной группах констатирована
также в течение вторых суток после воздействия. И только к концу четвертых
суток величины искомых маркеров стресса практически восстановились до уровня
нормы.
Сразу после суточного голодания и
жажды цыплят обнаружено уменьшение МАЛ на 48,1
процента. По прошествии еще 8 ч величина МАЛ практически осталась
без изменений и только через 110 ч после начала опыта показатель достиг
величины, соответствующей состоянию покоя.
Закономерность изменения величины
соотношения Г/Л в результате суточного голодания и жажды подобна изменениям,
отмеченным после выдерживания цыплят при пониженной температуре.
Таким образом, известный и широко
апробированный способ, основанный на наблюдении за изменением величины
соотношения Г/Л в периферической крови и апробированный нами маркер – кинетика
миграционной активности циркулирующих лейкоцитов закономерно изменялись при
развитии постстрессной реакции у цыплят.
Однако, направленность кинетики этих
двух маркеров состояния напряжения неодинакова: величина Г/Л увеличивается, а МАЛ – уменьшается при стрессе.
Практическое использование обоих
способов свидетельствует, что эффективность у них примерно одинакова. Все же,
по нашему мнению, диагностика стресса путем наблюдения за МАЛ имеет ряд преимуществ по сравнению с
соотношением Г/Л. В частности, первый способ менее трудоемок, т.к. не требует
микроскопии мазков под иммерсией и более
доступен персоналу ветеринарных лабораторий птицефабрик, владеющему навыками
постановки серологических реакций.
На основе изложенных выше наблюдений,
проведенных совместно с проф. Скутарь И.Г., разработан способ диагностики
состояния стресса птиц, защищенный авторским свидетельством на изобретение
739408.
Формула изобретения: Способ
определения состояния стресса у птиц
путем исследования проб периферической крови, отличающийся тем, что с
целью повышения точности определения и его упрощения, устанавливают уровень
миграционной активности лейкоцитов до и после действия стрессового фактора,
сравнивают их и по отклонению от нормы судят о наличии общего адаптационного
синдрома.
В исследованиях,
посвященных изучению стресса и адаптации птиц, широко используется один из
косвенных физиологических тестов – кинетика величины соотношения гетерофилов и
лимфоцитов (Г/Л) периферической крови. Установлено,
что при развитии состояния стресса этот показатель увеличивается за счет
абортивного выброса незрелых клеток гетерофилов из костного мозга в кровяное
русло и миграции лимфоцитов из последнего
в ткани. Причем, изменения величины соотношения Г/Л коррелируют с сдвигом концентрации кортикостерона в крови птиц и
пропорциональны степени действия стресс-факторов различной природы (вакцинация,
плотность посадки, параметры микроклимата).
Доказано, что
соотношение Г/Л более объективный тест, чем кинетика концентрации этого
«гормона стресса», т.к. величина данного соотношения менее лабильна, а
собственно процедура отбора проб крови не вызывает изменений соотношения этих
клеток, как происходит с кортикостерона. Кроме того, гормональный статус имеет циркадный ритм, а у
несушек определяется еще и фазой формирования яйца.
Перспективными в
качестве маркеров стресса являются показатели активности иммунной системы,
состояние которой, как известно, существенно изменяется при развитии общего
адаптационного синдрома. При этом, например, нарушается синтез интерлейкинов и
соответственно кооперация различных популяций лимфоцитов.
Нами предложен
способ диагностики состояния стресса у птиц, защищенный авторским
свидетельством на изобретение, который основан на определении изменений
миграционной активности лейкоцитов (МАЛ) периферической крови.
Для определения
информативности указанных выше способов
проведен опыт на 20-дн. цыплятах (П-46), отобранных по методу аналогов. В качестве
стресс-факторов использовали 24-часовое голодание и жажду, а также охлаждение
особей при температуре 100С в течение 2 ч. В состоянии покоя
величина МАЛ составила в среднем 6,0±
Достоверность
различий средних величин Г/Л и МАЛ в контрольной и
опытной группах констатирована в течение
вторых суток после воздействия и только к концу четвертых суток величины
использованных маркеров стресса
восстановились до уровня нормы.
______________
e-mail: zabudsky@mail.ru
Можно заключить, что информативность искомых способов
диагностики стресса у птиц практически одинакова. Однако, по мнению автора,
диагностика стресса посредством МАЛ имеет преимущества
по сравнению с Г/Л. Так, первый способ менее трудоемок, т.к. не
требует микроскопии мазков под иммерсией и более доступен специалистам
производства и персоналу лабораторий
птицефабрик, имеющих навык постановки серологических реакций.